DNA提取試劑盒是根據氯/化/芐法構建的╃₪✘│₪，能夠從樣本中提取基因組DNA的試劑盒▩₪│☁✘。氯/化/苄具有能將含有纖維素等的細胞壁中的羥基苄基化╃₪✘│₪，從而破壞細胞壁的特性▩₪│☁✘。本製品利用了氯/化/苄的這一特性╃₪✘│₪，將植物樣品凍結融解後╃₪✘│₪，再使用Pipet Tip的尖//端將植物樣品在Microtube壁上數次按壓即可破壞細胞壁▩₪│☁✘。本法與傳統方法相比╃₪✘│₪，省去了液氮研磨等煩瑣步驟╃₪✘│₪，有利於一次性處理大量樣品▩₪│☁✘。而且╃₪✘│₪，本製品經過了改良╃₪✘│₪，熱處理時間只需15分鐘╃₪✘│₪，使用本製品從實驗開始至水相回收只需30分鐘時間▩₪│☁✘。得到的基因組DNA可以進行PCR擴增及限制酶處理等▩₪│☁✘。

操作方法·✘•◕✘：
全套操作約需1小時╃₪✘│₪，分勻漿╃✘、細胞裂解╃✘、除蛋白╃✘、DNA純化等步驟╃₪✘│₪，詳細說明如下▩₪│☁✘。
勻漿和細胞裂解╃₪✘│₪，使用不同的實驗材料需採用不同的勻漿步驟╃₪✘│₪，具體說明如下·✘•◕✘：

【從動物組織中提取基因組DNA】
使用研缽進行勻漿時·✘•◕✘：
① 取1～100 mg的動物組織或人組織移入冰浴預冷的研缽中╃₪✘│₪，快速用力展研成勻漿▩₪│☁✘。
注）下列組織請加液氮研磨至粉末狀▩₪│☁✘。
A．富含DNA酶的胰臟╃✘、脾臟╃✘、胸腺╃✘、淋巴等組織▩₪│☁✘。
B．富含膠原蛋白的皮膚╃✘、肌腱等組織▩₪│☁✘。
C．富含角質蛋白的組織或堅硬的組織（如骨骼）等▩₪│☁✘。
② 加入650 μl的Solution A和0.9 μl的RNase A1╃₪✘│₪，溫和研磨30秒鐘▩₪│☁✘。
注）使用上述①-注）的實驗材料時╃₪✘│₪，請在加入Solution A及RNase A1後╃₪✘│₪，將研缽置於65℃水浴上研磨1分鐘▩₪│☁✘。
③ 收集650 μl研磨好的組織勻漿液移至Collection Tube中▩₪│☁✘。如果勻漿體積不足650 μl╃₪✘│₪，請補充Solution A至650 μl╃₪✘│₪，65℃保溫5分鐘▩₪│☁✘。
使用研磨棒進行勻漿時:
① 取1～100 mg的動物組織或人組織移入冰浴預冷的Collection Tube 中╃₪✘│₪，用研磨棒快速研磨成糊狀▩₪│☁✘。
② 加入350 μl的Solution A和0.9 μl的RNase A1後用研磨棒快速研磨成勻漿▩₪│☁✘。
③ 加入350 μl的Solution A將研磨棒上的勻漿衝入Collection Tube中╃₪✘│₪，充分振盪混合後╃₪✘│₪，65℃保溫5分鐘▩₪│☁✘。

【從植物材料或植物培養細胞中提取基因組DNA】
① 按下表稱取適量的新鮮植物材料（如選用的是冷凍乾燥植物材料╃₪✘│₪，則用量減半）╃₪✘│₪，剪成小塊放入研缽中╃₪✘│₪，加入液氮╃₪✘│₪，待樣品冷凍完後快速╃✘、用力研磨至粉末狀▩₪│☁✘。研磨時應間斷加入液氮以防止材料融化▩₪│☁✘。
* 如選取植物的根╃✘、種子等樣品時╃₪✘│₪，因其基因組DNA含量很低╃₪✘│₪，需使用超過表格中所示的引數用量╃₪✘│₪，此時請分兩管進行步驟1～6的實驗操作╃₪✘│₪，在步驟7的操作中再將各管溶液分次加入至同一Spin Column中過濾╃₪✘│₪，使各管的基因組DNA結合到同一個Spin Column上▩₪│☁✘。
如從培養的植物細胞中提取基因組DNA╃₪✘│₪，請離心收集2×103～1×107的培養植物細胞╃₪✘│₪，加入150 μl水充分懸浮細胞後移入研缽中╃₪✘│₪，加入液氮後快速╃✘、用力研磨至粉末狀▩₪│☁✘。
注）樣品研磨應充分╃₪✘│₪，否則將會嚴重影響基因組DNA的收率▩₪│☁✘。
② 將研缽移至65℃水浴╃₪✘│₪，當樣品粉末剛開始融化時╃₪✘│₪，向研缽中加入700 μl的Solution A和1.2 μl的RNase A1╃₪✘│₪，用力碾磨30秒▩₪│☁✘。
③ 收集650 μl研磨好的組織勻漿移至Collection Tube中▩₪│☁✘。如勻漿體積不足650 μl╃₪✘│₪，請補充Solution A至650 μl▩₪│☁✘。65℃保溫15分鐘▩₪│☁✘。
注）處理富含纖維的根/莖等植物材料或富含澱粉╃✘、蛋白質的種子等時╃₪✘│₪，可延長水浴時間至60分鐘▩₪│☁✘。

【從全血中提取基因組DNA】
① 取10～250 μl的全血（含抗凝劑）加入至Collection Tube中▩₪│☁✘。
② 加入500 μl的Solution A▩₪│☁✘。
③ 加入1 μl的RNase A1╃₪✘│₪，激烈振盪15秒鐘後╃₪✘│₪，冰浴5分鐘▩₪│☁✘。
注） 人與動物的抗凝全血的一次處理量為≤250 μl；禽類╃✘、兩棲類的抗凝全血的一次處理量為≤10 μl▩₪│☁✘。

【從培養細胞中提取基因組DNA】
一╃✘、使用懸浮培養的動物細胞時·✘•◕✘：
① 使用Collection Tube收集1×105～1.5×107的細胞懸浮液╃₪✘│₪，5,000 rpm離心5分鐘╃₪✘│₪，棄上清（細胞培養液）▩₪│☁✘。
② 加入150 μl的滅菌蒸餾水或PBS懸浮細胞▩₪│☁✘。
③ 加入500 μl的Solution A和0.8 μl的RNase A1╃₪✘│₪，激烈振盪15秒鐘╃₪✘│₪，然後室溫靜置1分鐘▩₪│☁✘。
二╃✘、使用貼壁細胞時·✘•◕✘：
① 棄盡培養液╃₪✘│₪，向培養皿中加入650 μl的Solution A╃₪✘│₪，室溫靜置1分鐘▩₪│☁✘。
注）96孔板等的每個孔中一次容納不了650 μl 溶液時╃₪✘│₪，請分數次處理細胞▩₪│☁✘。
② 用移液槍的槍頭吹落貼壁培養細胞╃₪✘│₪，取650 μl的細胞懸浮液轉移至Collection Tube中▩₪│☁✘。
③ 加入0.8 μl的RNase A1╃₪✘│₪，激烈振盪15秒鐘╃₪✘│₪，然後室溫靜置1分鐘▩₪│☁✘。
2. 加入400 μl的Solution B╃₪✘│₪，振盪混合▩₪│☁✘。
3. 加入1 ml的4℃預冷的Solution C╃₪✘│₪，充分混勻後╃₪✘│₪，12,000 rpm離心2分鐘▩₪│☁✘。
4. 棄去上層有機相╃₪✘│₪，再加入1 ml的4℃預冷的Solution C╃₪✘│₪，充分混勻後╃₪✘│₪，12,000 rpm離心2分鐘▩₪│☁✘。
5. 棄去上層有機相╃₪✘│₪，然後將水相溶液（無色下層）轉移至置於Collection Tube上的Filter Cup中╃₪✘│₪，12,000 rpm離心1分鐘▩₪│☁✘。
注）有機相（上層）帶有顏色╃₪✘│₪，請務必除盡╃₪✘│₪，否則會阻礙DNA結合到DNA製備膜上▩₪│☁✘。相間沉澱不必考慮╃₪✘│₪，在過濾時將被去除▩₪│☁✘。
6. 棄Filter Cup╃₪✘│₪，在濾液中加入400 μl的DB Buffer╃₪✘│₪，混合均勻▩₪│☁✘。
7. 將試劑盒中的Spin Column安置於Collection Tube上▩₪│☁✘。將上述操作6混合溶液轉移至Spin Column中╃₪✘│₪，12,000 rpm離心1分鐘╃₪✘│₪，棄濾液▩₪│☁✘。
8. 將500 μl的Rinse A加入至Spin Column中╃₪✘│₪，12,000 rpm離心30秒鐘╃₪✘│₪，棄濾液▩₪│☁✘。
9. 將700 μl的Rinse B加入至Spin Column中╃₪✘│₪，12,000 rpm離心30秒鐘╃₪✘│₪，棄濾液▩₪│☁✘。
注）請沿Spin Column管壁四周加入Rinse B╃₪✘│₪，這樣有助於沖洗沾附於管壁上的鹽份▩₪│☁✘。
10. 重複操作步驟9▩₪│☁✘。
11. 將Spin Column安置於新的1.5 ml的離心管上╃₪✘│₪，在Spin Column膜的中央處加入50～200 μl的滅菌蒸餾水或Elution Buffer╃₪✘│₪，室溫靜置1分鐘▩₪│☁✘。
注）把滅菌蒸餾水或Elution Buffer加熱至65℃使用時有利於提高洗脫效率▩₪│☁✘。
12. 12, 000 rpm離心1分鐘洗脫DNA▩₪│☁✘。